Diagnostic différentiel de Francisella philomiragia, Francisella noatunensis, Francisella novicida et Francisella tularensis
Créé le 15 décembre 1999
Dernière mise à jour le 01 mars 2010
Diagnostic différentiel de Francisella philomiragia, Francisella noatunensis, Francisella novicida et Francisella tularensis
D'après :
. HOLLIS (D.G.), WEAVER (R.E.), STEIGERWALT (A.G.), WENGER (J.D.), MOSS (C.W.) et BRENNER (D.J.) : Francisella philomiragia comb. nov. (formerly Yersinia philomiragia) and Francisella tularensis biogroup novicida (formerly Francisella novicida) associated with human disease. J. Clin. Microbiol., 1989, 27, 1601-1608.
. MIKALSEN (J.), OLSEN (A.B.), TENGS (T.) et COLQUHOUN (D.J.) : Francisella philomiragia subsp. noatunensis subsp. nov., isolated from farmed Atlantic cod (Gadus morhua L.). Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2007, 57, 1960-1965.
. OLSUFJEV (N.G.) et MESHCHERYAKOVA (I.S.) : Subspecific taxonomy of Francisella tularensis McCoy and Chapin 1912. Int. J. Syst. Bacteriol., 1983, 33, 872-874.
. OTTEM (K.F.), NYLUND (A.), KARLSBAKK (E.), FRIIS-MØLLER (A.) et KAMAISHI (T.) : Elevation of Francisella philomiragia subsp. noatunensis Mikalsen et al. (2007) to Francisella noatunensis comb. nov. [syn. Francisella piscicida Ottem et al. (2008) syn. nov.] and characterization of Francisella noatunensis subsp. orientalis subsp. nov., two important fish pathogens. J. Appl. Microbiol., 2009, 106, 1231-1243.
. OTTEM (K.F.), NYLUND (A.), KARLSBAKK (E.), FRIIS-MØLLER (A.), KROSSØY (B.) et KNAPPSKOG (D.) : New species in the genus Francisella (Gammaproteobacteria; Francisellaceae); Francisella piscicida sp. nov. isolated from cod (Gadus morhua). Arch. Microbiol., 2007, 188, 547-550.
. SJÖSTEDT (A.B.) : Family III. Francisellaceae fam. nov. In : D.J. BRENNER, N.R. KRIEG, J.T. STALEY et G. M. GARRITY (eds), Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology, second edition, vol. 2 (The Proteobacteria), part B (The Gammaproteobacteria), Springer, New York, 2005, pp. 199-200.
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| Francisella philomiragia | F. noatunensis* | F. novicida | F. tularensis subsp. tularensis, F. tularensis subsp. holarctica, F. tularensis subsp. mediasiatica |
| Morphologie | Petits coccobacilles immobiles à Gram négatif | Petits coccobacilles immobiles à Gram négatif | Petits coccobacilles immobiles à Gram négatif | Petits coccobacilles immobiles à Gram négatif |
| Température optimale de croissance (°C) | 37 | 22 | 37 | 37 |
| Croissance sur MacConkey | (-) (toujours faible et/ou nécessitant 3 à 7 jours d'incubation pour les souches capables de croître) | d | d (toujours faible et nécessitant 3 à 7 jours d'incubation pour les souches capables de croître) | - (toujours faible pour les rares souches capables de croître) |
| Croissance sur gélose au sang | + | - | + | - (sauf de rares exceptions) |
| Production de bêta-lactamase (test de Gots**) | + | + | + | + (sauf pour F. tularensis subsp. mediasiatica) |
| Oxydase (Kovacs) | + | - | - | - |
| Production d’hydrogène sulfuré en milieu TSI après 48 heures d'incubation N.B. : toutes les Francisella spp. produisent de l'hydrogène sulfuré dans un milieu enrichi en cystéine. | 64 p. cent des souches donnent une réaction positive en 48 heures et 34 p. cent des souches donnent une réaction positive en 3 à 7 jours. | - | - | - |
| Croissance en bouillon nutritif en présence de 6 p. cent de NaCl | (+) | d | - | |
| Uréase | - | - | - | - |
| Réduction des nitrates | - | - | - | - |
| Hydrolyse de la gélatine | d (75 p. cent des souches positives) | - | - | - |
| Acidification du glucose | Faiblement + et nécessitant 3 à 7 jours d'incubation pour 43 p. cent des souches | d | Faiblement + en 3 à 7 jours | + mais la réaction est parfois faiblement + et /ou nécessite 3 à 7 jours d'incubation. |
| Acidification du glycérol | - | - | + | Faiblement + pour la sous-espèce tularensis, pour la sous-espèce mediasiatica et pour le biovar Japonica de la sous-espèce holarctica. Les autres souches donnent un résultat négatif. |
| Acidification du maltose | Faiblement + et nécessitant 3 à 7 jours d'incubation pour 43 p. cent des souches | d | d (les réactions positives sont faiblement positives) | + pour F. tularensis subsp. tularensis et F. tularensis subsp. holarctica (mais la réaction est parfois faiblement + et /ou nécessite 3 à 7 jours d'incubation). |
| Acidification du saccharose | Faiblement + et nécessitant 3 à 7 jours d'incubation pour 43 p. cent des souches | d | Faiblement + | - |
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| Francisella philomiragia | F. noatunensis* | F. novicida | F. tularensis subsp. tularensis, F. tularensis subsp. holarctica, F. tularensis subsp. mediasiatica |
+ : 90 p. cent des souches ou plus donnent un résultat positif.
- : 10 p. cent des souches ou moins donnent un résultat positif.
(+) : 80 à 89 p. cent des souches donnent un résultat positif.
(-) : 11 à 20 p. cent des souches donnent un résultat positif.
d : 21 à 79 p. cent des souches donnent un résultat positif.
Les caractères permettant de distinguer les deux sous-espèces sont donnés dans le tableau "Caractères bactériologiques permettant de distinguer les deux sous-espèces de Francisella noatunensis".
L'éventuelle production d'une bêta-lactamase est recherchée en ensemencant la souche à tester à la surface d'une gélose nutritive dans laquelle on a inclus d'une part une bêta-lactamine (pénicilline G par exemple) et d'autre part avec une souche bactérienne sensible à cet antibiotique.
Après incubation, la production d'une bêta-lactamase par la souche à tester entraine la destruction de la péniclline G incorporée dans le milieu gélosé ce qui a pour effet de permettre la culture de la souche révélatrice sensible inhibée jusqu'alors.
Source : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire, J.P. Euzéby — version archivée.