Principaux caractères permettant de différencier les espèces et sous-espèces du genre Staphylococcus
Créé le 2 juin 1999
Dernière mise à jour le 22 août 2005
Principaux caractères permettant de différencier les espèces et sous-espèces du genre Staphylococcus
isolées en médecine vétérinaire et produisant ou pouvant produire une coagulase
D'après :
. BRUN (Y.) et BES (M.) : Staphylococcus. In : J. FRENEY, F. RENAUD, W. HANSEN et C. BOLLET : Précis de bactériologie clinique, Editions ESKA, Paris, 2000, pp. 783-834.
. DEVRIESE et HÁJEK : Identification of pathogenic staphylococci isolated from animals and foods derived from animals. J. Appl. Bacteriol., 1980, 49, 1-11.
. DEVRIESE (L.A.), VANCANNEYT (M.), BAELE (M.), VANEECHOUTTE (M.), DE GRAEF (E.), SNAUWAERT (C.), CLEENWERCK (I.), DAWYNDT (P.), SWINGS (J.), DECOSTERE (A.) et HAESEBROUCK (F.) : Staphylococcus pseudintermedius sp. nov., a coagulase-positive species from animals. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2005, 55, 1569-1573.
. FOSTER (G.), ROSS (H.M.), HUTSON (R.A.) et COLLINS (M.D.) : Staphylococcus lutrae sp. nov., a new coagulase-positive species isolated from otters. Int. J. Syst. Bacteriol., 1997, 47, 724-726.
. FRENEY (J.), KLOOS (W.E.), HAJEK (V.), WEBSTER (J.A.), BES (M.), BRUN (Y.) et VERNOZY-ROZAND (C.) : Recommended minimal standards for description of new staphylococcal species. Int. J. Syst. Bacteriol., 1999, 49, 489-502.
. IGIMI (S.), TAKAHASHI (E.) et MITSUOKA (T.) : Staphylococcus schleiferi subsp. coagulans subsp. nov., isolated from the external auditory meatus of dogs with external ear otitis. Int. J. Syst. Bacteriol., 1990, 40, 409-411.
. KLOOS (W.E.) et BANNERMAN (T.L.) : Staphylococcus and Micrococcus. In : P.R. MURRAY, E.J. BARON, M.A. PFALLER, F.C. TENOVER et R.H. YOLKEN (éd.) : Manual of clinical microbiology, 7th edition, ASM Press, Washington, D.C., 1999, pp. 264-282.
| 1) S. aureus subsp. aureus ; 2) S. aureus subsp. anaerobius ; 3) S. delphini; 4) S. hyicus; 5) S. intermedius ; 6) S. lutrae ; 7) S. pseudintermedius ; 8) S. schleiferi subsp. coagulans. | ||||||||
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| Coagulase* | + | + | + | d | + | + | + | + |
| Clumping factor | + | - | - | - | d | - | - | - |
| Croissance en aérobiose | + | - | + | + | + | + | + | + |
| Croissance à 15 °C | + | - |
| + | + |
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| Croissance à 45 °C | + | - | + | - ou faible et retardée | + | + |
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| Diamètre des colonies | + | - | + | + | + | - | + | d |
| Pigmentation possible des colonies | + | - | - | - | - | - | - | - |
| Réduction des nitrates | + | - | + | + | + | + | + | + |
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| 1) S. aureus subsp. aureus ; 2) S. aureus subsp. anaerobius ; 3) S. delphini; 4) S. hyicus; 5) S. intermedius ; 6) S. lutrae ; 7) S. pseudintermedius ; 8) S. schleiferi subsp. coagulans. | ||||||||
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| DNase thermostable | + | + | - | + | + | + | + | + |
| Hyaluronidase | + | + |
| + | - | - | - | |
| Hémolyse | + | + | + | - | d | + | + | + |
| VP*** | + | - | - | - | - | - | + | + |
| Bêta-galactosidase | - | - |
| - | + | + | + | d |
| Bêta-glucuronidase | - | - |
| d, très généralement + | - |
| - |
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| Pyrrolidonyl arylamidase | - |
| - | - | + |
| + |
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| 1) S. aureus subsp. aureus ; 2) S. aureus subsp. anaerobius ; 3) S. delphini; 4) S. hyicus; 5) S. intermedius ; 6) S. lutrae ; 7) S. pseudintermedius ; 8) S. schleiferi subsp. coagulans. | ||||||||
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| D-galactose**** | + | - |
| + | + | + | + | + |
| Maltose**** | + | + | + | - | - ou faiblement + | + | + | - |
| D-mannitol**** | + | - | + faible | - | d | + | lent et faiblement + | d |
| Saccharose | + | |||||||
| D-tréhalose**** | + | - | - | + | + | + | + | - |
| D-ribose**** | + | - |
| + | + |
| + | + |
| D-xylose**** | - | - | - | - | - | +***** | - | - |
| Résistance à 8 µg/mL d'acriflavine | + | - | - | - | - | - | - | |
| Résistance à la polymyxine B | + |
| - | + | - | - | - | - |
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| 1) S. aureus subsp. aureus ; 2) S. aureus subsp. anaerobius ; 3) S. delphini; 4) S. hyicus; 5) S. intermedius ; 6) S. lutrae ; 7) S. pseudintermedius ; 8) S. schleiferi subsp. coagulans. | ||||||||
* : Plasma de lapin (Difco).
** : Sur gélose P après 3 jours d'incubation à 37 °C.
Composition (en g/L) de la gélose P : agar : 15 ; peptone : 10 ; NaCl : 5 ; extraits de levure : 5 g ; glucose : 1 g.
*** : La technique dérive de celle de Davis et Hoyling. La souche à étudier est ensemencée sur une gélose cœur-cervelle contenant 1 p. cent de glucose. Après 24 heures d'incubation à 37 °C, on dépose sur la gélose un disque similaire à ceux utilisés pour les antibiogrammes et imprégné d'une solution à 10 p. cent de pyruvate de sodium. Après 3 heures d'incubation, on place sur le disque une goutte de potasse à 40 p. cent, une goutte d'une solution de créatinine à 1 p. cent et une goutte d'une solution alcoolique à 1 p. cent d'alpha-naphtol. L'apparition, dans un délai de 1 heure, d'une couleur rose ou rouge signe une réaction positive.
**** : Acidification en aérobiose.
***** : Selon Brun et Bes, le caractère d'acidification du xylose n'est pas retrouvé en utilisant une galerie API Staph.
Source : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire, J.P. Euzéby — version archivée.