Bacterio

Quelques caractères phénotypiques de quelques espèces du genre Weissella

Créé le 31 janvier 2002
Dernière mise à jour le 15 janvier 2009

 

Quelques caractères phénotypiques de quelques espèces du genre Weissella

 

D'après:
. BJÖRKROTH (K.J.), SCHILLINGER (U.), GEISEN (R.), WEISS (N.), HOSTE (B.), HOLZAPFEL (W.H.), KORKEALA (H.J.) et VANDAMME (P.) : Taxonomic study of Weissella confusa and description of Weissella cibaria sp. nov., detected in food and clinical samples. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2002, 52, 141-148.
. CHOI (H.J.), CHEIGH (C.I.), KIM (S.B.), LEE (J.C.), LEE (D.W.), CHOI (S.W.), PARK (J.M.) et PYUN (Y.R.) : Weissella kimchii sp. nov., a novel lactic acid bacterium from kimchi. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2002, 52, 507–511.
. COLLINS (M.D.), SAMELIS (J.), METAXOPOULOS (J.) et WALLBANKS (S.) : Taxonomic studies on some Leuconostoc-like organisms from fermented sausages: description of a new genus Weissella for the Leuconostoc paramesenteroides group of species. J. Appl. Bacteriol. 1993, 75, 595-603.
. DE BRUYNE (K.), CAMU (N.), LEFEBVRE (K.), DE VUYST (L.) et VANDAMME (P.) : Weissella ghanensis sp. nov., isolated from a Ghanaian cocoa fermentation. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2008, 58, 2721-2725.
. LEE (J.S.), LEE (K.C.), AHN (J.S.), MHEEN (T.I.), PYUN (Y.R.) et PARK (Y.H.) : Weissella koreensis sp. nov., isolated from kimchi. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2002, 52, 1257-1261.
. MAGNUSSON (J.), JONSSON (H.), SCHNÜRER (J.) et ROOS (S.) : Weissella soli sp. nov., a lactic acid bacterium isolated from soil. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2002, 52, 831-834.
. TANASUPAWAT (S.), SHIDA (O.), OKADA (S.) and KOMAGATA (K.): Lactobacillus acidipiscis sp. nov. and Weissella thailandensis sp. nov., isolated from fermented fish in Thailand. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2000, 50, 1479-1485.

 

1) W. cibaria* ; 2) W. confusa ; 3) W. ghanensis ; 4) W. halotolerans ; 5) W. hellenica ; 6) W. kandleri ; 7) Weissella koreensis ; 8) W. minor ; 9) W. paramesenteroides ; 10) W. soli ; 11) W. thailandensis ; 12) W. viridescens.

 

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Morphologie

Petits bacilles

Petits bacilles amincis à l'une des extrémités

Petits bacilles

Bacilles de forme irrégulière ou bacilles coccoïdes

Coques de grande taille

Bacilles de forme irrégulière

Petits bacilles de forme irrégulière ou bacilles coccoïdes

Petits bacilles coccoïdes de forme irrégulière

Coques

Petits bacilles souvent amincis à l'une des extrémités

Coques

Petits bacilles de forme irrégulière

L-arabinose**

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Cellobiose**

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Galactose**

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Maltose**

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Mélibiose**

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Raffinose**

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Ribose**

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Saccharose**

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Tréhalose**

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Xylose**

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Hydrolyse de l'esculine

 

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(+)

 

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Production de NH3 à partir de l'arginine***

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Formation de dextrane

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Croissance à 45 °C

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Isomères de l'acide lactique

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1) W. cibaria* ; 2) W. confusa ; 3) W. ghanensis ; 4) W. halotolerans ; 5) W. hellenica ; 6) W. kandleri ; 7) Weissella koreensis ; 8) W. minor ; 9) W. paramesenteroides ; 10) W. soli ; 11) W. thailandensis ; 12) W. viridescens.

 

+ : Réaction positive pour au moins 90 p. cent des souches.
- : Réaction négative pour au moins 90 p. cent des souches.
d : Réaction positive pour 11 à 89 p. cent des souches.
(+) : Réaction tardivement positive.

* : Weissella cibaria inclut les souches préalablement décrites sous l'appellation de Weissella kimchii [voir : ENNAHAR (S.) et CAI (Y.) : Genetic evidence that Weissella kimchii Choi et al. 2002 is a later heterotypic synonym of Weissella cibaria Björkroth et al. 2002. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2004, 54, 463-465.]

** : Acidification.

*** : Hydrolyse de l'arginine :

1) D'après BARROW (G.I.) et FELTHAM (R.K.A.) (éds;) : Cowan and Steel's Manual for the Identification of Medical Bacteria. Cambridge University Press, Cambridge, third edition, 1993, 331 pages.

Ensemencer 5 mL d'un bouillon Arginine et, après 24 heures d'incubation, ajouter 0,25 mL du réactif de Nessler. Une réaction positive se traduit par une coloration brune.

Bouillon Arginine :
Peptone : 5 g
Extraits de levure : 5 g
K2HPO4 : 2 g
Glucose : 0,5 g
Arginine (chlorhydrate) : 3 g
Eau distillée : 1000 mL

Réactif de Nessler :
Dissoudre 8 g d'iodure de potassium et 11,5 g d'iodure de mercure dans 20 mL d'eau distillée puis ajuster le volume à 50 mL avec de l'eau distillée.
Ajouter 50 mL de soude 6 N.

Laisser reposer 24 heures, conserver à l'abri de la lumière.

 2) D'après W. Hansen [HANSEN (W.) : Leuconostoc, bactéries apparentées et Vagococcus. In : J. FRENEY, F. RENAUD, W. HANSEN et C. BOLLET : Précis de bactériologie clinique, Editions ESKA, Paris, 2000, pp. 901-913).

Dissoudre 10,5 g du milieu de base de Møller dans 1 litre d'eau distillée. Ajouter 10 g de L-arginine chlorhydrate. Chauffer en agitant fréquemment jusqu'à dissolution complète. Répartir à raison de 3 mL par tube. Stériliser 15 min. à 121 °C.
Ensemencer le tube avec une culture fraîche et recouvrir de paraffine liquide. Incuber 3 jours à 35 °C. Une réaction positive se traduit par une coloration pourpre à violette et une réaction négative par une coloration jaune.

Milieu de Møller :
Peptone pepsique de tissu animal : 5 g
Extyrait de viande de bœuf : 5 g
Glucose : 0,5 g
Pourpre de bromocrésol : 0,01 g
Rouge crésol : 0,005 g
Pyridoxal : 0,005 g

 

Source : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire, J.P. Euzéby — version archivée.